tes緩沖液（te緩沖液）

大家好,小霞來為大家解答以上的問題。tes緩沖液，te緩沖液這個很多人還不知道,現在讓我們一起來看看吧！

1、TE緩沖液的作用及用途：對DNA的堿基有保護性，包括提取好的DNA也要放在TE緩沖液中保存。

2、PH緩沖系統對維持生物的正常pH值，正常生理環境起重要作用。

3、多數細胞僅能在很窄的pH范圍內進行活動，而且需要有緩沖體系來抵抗在代謝過程中出現的pH變化。

4、在生物體中有三種主要的pH緩沖體系，它們是蛋白質、重碳酸鹽緩沖體系和磷酸鹽緩沖體系。

5、每種緩沖體系所占的分量在各類細胞和器官中是不同的。

6、TE緩沖液的成分：生化實驗室常常用的緩沖系主要有磷酸、檸檬酸、碳酸、醋酸、巴比妥酸、Tris（三羥甲基氨基甲烷）等系統，在生化實驗或研究工作中要慎重地選擇緩沖體系，因為有時影響實驗結果的因素并不是緩沖液的pH值，而是緩沖液中的某種離子。

7、如硼酸鹽、檸檬酸鹽、磷酸鹽和三羥甲基甲烷等緩沖劑都可能產生不需要的反應。

8、其主要缺點時溫度效應。

9、這點往往被忽視，在室溫pH是7.8的Tris一緩沖液，在4℃時是8.4，在37℃時是7.4，因此，4℃配制的緩沖液拿到37℃測量時，其氫離子濃度就增加了10倍。

10、而且它在pH7.5以下，緩沖能力差。

11、以上內容參考：百度百科—TE緩沖液 TE緩沖液是Tris +EDTA緩沖液，這種緩沖液我們一般用作溶解劑或保持劑，主要是調控PH，TAE是一種電泳緩沖液，主要用于DNA分子的電泳。

12、 TE組成濃度：10mM Tris-HCl 1mM EDTA PH=8.0 配制量：500ml 配制方法：量取下列溶液于500ml燒杯中 1M Tris-HCl Buffer PH=8.0 5ml 0.5M EDTA PH=8.0 1ml 向燒杯中加入約400mldd H2O均勻混合；將溶液定容到500ml后，高溫高壓滅菌；室溫保存.TAE是使用最廣泛的緩沖系統。

13、其特點是超螺旋在其中電泳時更符合實際相對分子質量（TBE中電泳時測出的相對分子質量會大于實際分子質量），且雙鏈線狀DNA在其中的遷移率較其他兩種緩沖液快約10%，電泳大于13kb的片段時用TAE緩沖液將取得更好的分離效果，此外，回收DNA片段時也易用TAE緩沖系統進行電泳。

14、TAE的缺點是緩沖容量小，長時間電泳（如過夜）不可選用，除非有循環裝置使兩極的緩沖液得到交換。

15、 50×TAE Buffer 配制方法： 1. 稱量Tris 242g，Na2EDTA.2H2O 37.2g 于1L燒杯中； 2.向燒杯中加入約800ml去離子水，充分攪拌均勻； 3加入57.1ml的冰乙酸，充分溶解； 4.加去離子水定容至1L后，室溫保存。

16、用于溶解DNA，能穩定儲存DNA。

本文到此分享完畢，希望對大家有所幫助。